荧光定量PCR检测led光学技术
页面内容
· 实时荧光定量 PCR 检测系统的组件
· 反应模块
· 光学检测系统
· 仪器软件
实时荧光定量 PCR 检测系统包括:
反应模块 — 将样品加热并冷却至精确的温度,以促进核苷酸变性、退火,然后为每轮 DNA 扩增进行聚合酶介导的延伸
光学检测系统 — 在存在荧光报告基因(如 DNA 结合染料或标记探针)的情况下,测量每个 PCR 反应的荧光强度可以确定实验样品中是否存在感兴趣的靶标
仪器软件 — 实时荧光定量 PCR 检测系统通常由运行专用软件的附加计算机控制,该软件启动和监控运行,然后便于解释结果。一些仪器,如 CFX96 触摸和 CFX384 触摸实时荧光定量 PCR 检测系统,包括一个集成接口,无需计算机即可运行。数据分析仍然需要计算机
反应模块
温度控制
帕尔贴 — 目前使用的大多数热循环仪都采用这种方法。它使用固态主动热泵,根据电能消耗的温度梯度将热量从一侧传递到另一侧。帕尔贴模块的一个非常有用的功能是可以建立热梯度(图1),从而可以在单次运行中优化测定的退火步骤
图 1.CFX96 触摸反应块的热梯度。最高温度在顶部,最低温度在底部。加热和冷却的空气 — 这种类型的仪器使用一个腔室,其中管子悬浮,并且根据PCR的要求,在规定温度的空气循环指定的时间段内
格式
反应块有多种形式,最常见的是96孔模块(图2),反应体积范围为1至125μl。具有超过384个孔的块通常使用微流体,其体积在微微到纳升范围内。
图 2.CFX96 触摸反应块的特写视图。这种质量较小的样品块可产生快速升降温和沉降,快速达到目标温度。
光学检测系统
有各种各样的光学系统使用光源,滤光片和检测器的组合来测量实时PCR反应中存在的荧光量。
光源
· 发光二极管 (LED) — 穿梭机构中可以存在单个或多个 LED,其位于每个孔的上方,以便每个孔都独立发光(图 3),或者这些 LED 可以排列在一个固定阵列中,一次激发多个孔(图 4)
图 3.CFX96 触摸光学穿梭车6个滤波LED和6个滤波光电二极管用于激励和检测。在窄带宽内过滤光,确保仅收集来自所需荧光团的数据。
图例.4. 微型光学™实时荧光定量 PCR 检测系统光学器件。四十八个LED快速连续发射,一次照亮单个样品,而菲涅耳透镜将每个光束直接聚焦到相应孔的中心,从而最大限度地减少光损失。发射的荧光被分成两束,通过单独的滤光片传递到两个敏感的光电二极管。
卤素灯 — 该光源发出广谱白光,然后对其进行过滤以激发特定的荧光团(图 5)
图例.5. iQ™5实时荧光定量 PCR 检测系统光学器件。所有96个孔都由窄带通滤波器和卤钨灯的组合激发。来自灯的过滤光从镜子反射出来,通过冷凝透镜,并聚焦到每个孔的中心。从孔中发射的荧光从主折叠镜反射,通过发射滤光片,并由12位电荷耦合器件(CCD)检测。激光 - 这发射高强度光,但带宽较窄,将其用途限制在从一小组荧光团收集数据,限制了其在多路复用中的应用
探测器
来自激发的荧光团的光可以通过固定装置(图4)或可移动装置(图3)检测。实时荧光定量 PCR 仪器中使用了几种类型的检测器。
光电二极管(图3和图4)是一种光电探测器,当暴露在光线下时,会导致电流流动。它们具有宽光谱范围,坚固耐用,故障率低,并且尺寸可以非常紧凑
CCD(图5)将其捕获的光转换为数字数据。捕获的图像质量由分辨率(以百万像素为单位)决定。CCD通常用于捕获反应板的图像,然后由仪器软件解释其内容
光电倍增管(PMT;图6)乘以入射光产生的电流
图 6.DNA引擎光学2实时荧光定量PCR检测系统光学。®图中显示了从 LED 阵列到 PMT 的光路。
仪器软件
实时仪器软件由以下主要组件组成:
协议设置
板设置
数据采集
数据分析
协议设置:指定变性、退火和延伸参数、重复循环次数以及收集数据的步骤(图 7)。
图 7.CFX管理器软件中的协议编辑器窗口。该协议包括扩增,然后是熔融曲线,以验证是否已经生产出特定产品。
板设置:识别每个孔的内容,以便在收集数据后可以正确分析数据(图8)。还指示了指定要读取的通道的扫描模式。
图 8.CFX管理器软件中的CFX96触摸板编辑器屏幕。在此屏幕中,选择四种不同的荧光基团,并指示样品类型,样品名称和目标名称。
数据采集:测量每个孔中反应混合物的荧光强度,并绘制与反应周期的关系。如果存在感兴趣的靶标,则可以实时监测其扩增(图9)。
图 9.CFX管理器软件中的“运行详细信息”窗口。显示96孔板所有孔的FAM荧光强度,直到循环16。
数据分析: 运行完成后,将自动计算基线,或者可以手动设置并应用于每个样品,以便可以比较从不同孔中获得的值。量化循环(Cq然后根据单个阈值线的位置(图10)或通过回归分析确定每个孔。
图 10.CFX管理器软件中的量化窗口。
通常在实时荧光定量PCR中进行的两种类型的分析是绝对定量和相对定量。通过将测试样品的Cq值与标准曲线进行比较来实现绝对定量。分析结果是每个给定量的样品(每个细胞,每μg总RNA)的核酸量(拷贝数,μg)。在相对定量中,分析结果是一个比率:当量的测试和对照样品A与B的等效量的目标核酸的相对量(倍差)(图11,参见实时PCR实验设计和数据分析以获取更多信息)。
图 11.CFX管理器软件中的基因表达窗口。针对两个感兴趣的靶标,显示了三个样本的归一化折叠表达式。